| moi |
Utente dal 09/03/2010 |
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Curriculum Vitae |
| Dati Anagrafici |
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Nome: |
Moira |
| Cognome: |
Clerici |
| Residenza: |
Residente in provincia di COMO |
| Data di Nascita: |
Nato nel 1980 |
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| Esperienze |
Dicembre 2009-Febbraio 2010– Vincitrice del bando relativo alle esercitazioni a supporto dei corsi di insegnamento di Chimica e Biochimica presso la Facoltà di Medicina e Chirurgia dell’Università degli Studi dell’Insubria, Varese.
Dicembre 2009– Conseguimento del titolo di Dottore in Ricerca in Biotecnologie, a seguito della discussione della tesi di dottorato dal titolo: “AMP-activated protein kinase regulates hyaluronan biosynthesis”.
Settembre-Dicembre 2008- Periodo di lavoro all’estero presso il laboratorio di Anatomia ed Imaging, Dipartimento di Biomedicina dell’Università di Kuopio (Finlandia), ospitata del Prof. Markku Tammi e supportata dalla vincita di una borsa di studio emessa dalla SIB (Società Italiana di Biochimica e Biologia Molecolare).
Ottobre 2006- Vincita di una borsa di studio per il Dottorato di Ricerca in Biotecnologie presso il Dipartimento di Scienze Biomediche Cliniche e Sperimentali, Università degli Studi dell’Insubria, Varese.
Marzo-Maggio 2006- Stage presso “TOMA Advanced Biomedical Assay S.p.a.”- Busto Arsizio (VA), laboratorio di diagnosi biomedica in ambito citogenetico, biochimico e molecolare.
Novembre 2005- Borsa di studio per un periodo di un anno presso la Divisione di Oncologia dell’Istituto Nazionale dei Tumori (Milano) relativo ad un progetto di ricerca dal titolo: “Genetic mapping and cloning of modifier genes of medullary thyroid carcinomas in a ret transgenic mouse model“.
Settembre 2005- Collaborazione con la Divisione di Oncologia dell’Istituto Nazionale dei Tumori (Milano) relativo al progetto dal titolo: “analysis of molecular mechanism of tumoral growth and progression”.
Marzo 2004-Luglio 2005- Tesi di laurea della durata di 18 mesi, svolta presso il laboratorio di Genetica Umana del Dipartimento di Scienze Molecolare dell’Università degli Studi dell’Insubria, dal titolo: “Characterization of RNASET2 promoter and identification of its regulative elements“. |
| Studi |
10 Dicembre 2009: DOTTORATO DI RICERCA IN BIOTECNOLOGIE (Università degli Studi dell'Insubria-Varese)
Dicembre 2005: Esame di Stato
18 Luglio 2005: LAUREA IN SCIENZE BIOLOGICHE (Vecchio Ordinamento) con indirizzo biomolecolare e con valutazione di 110/110 cum laude (Università degli Studi dell'Insubria-Varese)
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| Conoscenze |
TECNICHE DI BIOLOGIA MOLECOLARE:
Colture cellulari di cellule primarie, tumorali ed immortalizzate
Estrazione di DNA da tessuto, cellule e campioni biologici (sangue e liquido amniotico)
Estrazione di RNA da tessuto e cellule
Crioconservazione cellulare
Modificazione del DNA (metilazione)
Conta cellulare con camera di Burker
Test di proliferazione cellulare (MTT-MTS)
Analisi della vitalità cellulare e del ciclo cellulare mediante citofluorimetro
Test di apoptosi in vitro
Trasformazione di cellule competenti
Labelling di cellule fissate e vitali (compartimenti cellulari e matrice extracellulare)
Elettroforesi su gel di agarosio e di acrilamide (nativa ed SDS-PAGE)
Elettroforesi capillare
Colorazione di gel di acrilamide con Comassie Brilliant Blue G-250 e con metodo Silver Staining
Reazioni di PCR, Nested-PCR, Multiplex-PCR, PCR da inoculo, PCR a gradiente, real-time PCR e PCR con oligonucleotidi provvisti di adattatori
Reazioni di retrotrascrizione e RT-PCR
QF-PCR per la rilevazione delle condizioni di trisomia
Purificazione del prodotto di PCR da gel di agarosio ed acrilamide
Purificazione con fenolo/cloroformio
Precipitazione di DNA
Digestioni con enzimi di restrizione
Reazioni di blunting
Reazioni di ligazione
Reazioni di fosforilazione
Reazioni di defosforilazione
Clonaggi in vettori plasmidici
Estrazione di DNA di vettori plasmatici
Saggi di trasfezione con geni reporter (mediante lipofezione e nucleofezione)
Preparazione di estratti proteici cellulari
Test di Bradford
Test della -galattosidasi
Test della Luciferasi
EMSA
Preparazione di estratti proteici nucleari
Separazione di frazioni cellulari
Northern Blotting
Southern Blotting
Western Blotting
Marcatura radioattiva di sonde di DNA (terminale e non)
Reverse Dot Blot per l’individuazione di mutazioni associate al fenotipo fibrosi cistica
Pull-down
Immunoprecipitazione
Particle Exclusion Assay
Analisi della migrazione cellulare
Test di adesione cellulare
Produzione e caratterizzazione di topi congenici
Analisi delle UPD (disomie uniparentali)
Identificazione della presenza delle principali infezioni virali (HPV, citomegalovirus e toxo) e relative prove di inibizione
Rilevazione di mutazioni associate alle principali patologie (SMA, -talassemia,
mutazioni presenti nella regione AZF associate a sterilità, ecc.)
Spermiogramma
TECNICHE DI CITOGENETICA:
Allestimento di colture di villi coriali, liquidi amniotici e sangue periferico
Colcemizzazione di cellule in coltura
Allestimento di preparati cromosomici di sangue periferico, liquido amniotico e villo coriale
Fotografia delle metafasi ottenute da sangue periferico, liquido amniotico e villo coriale
Utilizzo del sistema computerizzato per la gestione di immagini di preparati citogenetici
Riconoscimento ed appaiamento dei cromosomi umani per la determinazione del cariotipo
TECNICHE DI BIOCHIMICA:
Zimografia
PAGEFS (per la separazione dei disaccaridi)
Estrazione di GAG dalla matrice extracellulare
Derivatizzazione di GAG con uso di AMAC
Analisi densitometrica
HPLC
Saggi spettrofotometrici di attività enzimatica
Dosaggio di composti chimici (quali l’acido uronico)
TECNICHE DI MICROSCOPIA:
Microscopia in campo chiaro
Microscopia a fluorescenza
Microscopia confocale in cellule fissate e vitali
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| Lingue straniere |
inglese: 8 |
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