Buongiorno a tutti, vengo ad esporvi un problema di difficile risoluzione:
Devo mettere in evidenza accumulo di glicogeno all'interno del citosol di linfociti su striscio ematico. Dopo colorazione PAS lo striscio dovrebbe avere colore grigio/azurro e mettere in evidenza in colore rosso l'eventuale presenza del glicogeno. Nei miei strisci il citosol si colora interamente in rosso non permettendomi di fare questa differenziazione. La metodica che sto applicando è la stessa riportata nel sito: PAS= ACIDO PERIODICO DI SCHIFF colotazione istochimica che permette di evidenziare il glicogeno nei tessuti, tramite delle ricerche sui i miei libri ti riassumo il procedimento Procedimento 1.Portare le sezioni all'acqua distillata 2. Mettere le sezioni in acido periodico all'1% per 5 min, lavare in acqua distillata 3. Mettere direttamente le sezioni in reattivo di Schiff per 20 min 4. Lavare in acqua distillata 5. Differenziare in acqua di fonte (calda) per 10 min 6. Lavare in acqua distillata 7. Contrastare con ematossilina di Mayer-Harris per 10 sec 8. Lavare in acqua distillata 9. Differenziare in acqua di fonte (calda) per 5 min 10. Lavare in acqua distillata, disidratare, diafanizzare e montare in Eukitt Soluzioni Reattivo di Schiff Sciogliere 5 gr di para-rosanilina in 150 ml di HCl 1 N (83,3 ml di HCl concentrato in 1000 ml di acqua distillata). Sciogliere 5 gr di meta-bisolfito di potassio in 850 ml di acqua distillata. Unire le due soluzioni e lasciare riposare al buio per 2 giorni. Filtrare dopo avere aggiunto 5 gr di carbone attivo Risultati Nuclei blu-viola Sostanze reattive rosso magenta in varie gradazioni
Ho apportato una modifica, consistente nel fissaggio dello striscio in metanolo. Confido nel vostro aiuto per risolvere questo problema.