Estrazione DNA da tessuti vegetali con CTAB 3%

Descrizione

Questo protocollo viene utilizzato per l’estrazione del DNA da tessuti vegetali in modo particolare legnosi (es. fitoplasmi da piante di vite).
La metodica di estrazione si basa sull’utilizzo del tampone CTAB ad una percentuale del 3%. È un protocollo di breve durata e con una fase di purificazione finale per purificare il DNA totale sia da eventuali tracce di CTAB rimasto dopo i passaggi di precipitazione e risospensione del DNA, sia dalle sostanze aromatiche/polissacaridi legati al pellet rimasto con il protocollo breve normale (Boudon Padieu_2003_EPPO).

1. Omogenare i singoli campioni con l’ausilio di palle e giare in acciaio di 10 mL per l’omogeneizzatore Tissue Lyzer (Qiagen)

2. Sotto cappa chimica preparare all’ultimo momento 7 ml per grammo di campione (nervature) di tampone CTAB 3% con 0,2% di 2-mercaptoetanolo (14 µlitri di 2-mercaptoetanolo in 7 ml di CTAB).

3. Aggiungere 7 ml di tale soluzione a ciascun campione nel mortaio. Tale operazione deve avvenire sotto cappa chimica.

4. Omogeneizzare bene i campioni e, utilizzando una micropipetta sterile pasteur monouso oppure con puntali da 1000 µlitri tagliati alla punta, trasferire 1 ml di ciascun campione in eppendorf da 2 ml.

5. Incubare a 65 °C per 20 minuti (oppure a 60 °C per 1 ora) nel Thermomixer con agitazione a 1400 rpm ogni 5 minuti

6. Sotto cappa chimica aggiungere 1 ml di cloroformio ad ogni campione (per ogni eppendorf) e mescolare bene per inversione (oppure con vortex per 20”).
- Centrifugare a 11000 g per 10 minuti a temperatura ambiente.
- Trasferire il sopranatante in nuove eppendorf da 2 ml, precedentemente numerate ed identificate, (preraffreddate).
- Aggiungere 1 ml di isopropanolo (conservato a –20°C) ed agitare bene per inversione.
- Mettere i campioni (eppendorf) in un rack e lasciarli per 5 minuti a –20°C.
- Centrifugare a 11000 g per 15 minuti a 4°C.
- Gettare l’isopropanolo scolandolo lentamente e facendo attenzione a non perdere il pellet originatosi in seguito alle centrifughe precedenti.
- Aggiungere al pellet 350 µlitri di NaCl 1,2 M e 350 µlitri di cloroformio, agitando bene per inversione fino a risospendere il pellet (staccarlo). In alternativa si può utilizzare il vortex (forse più efficace).
- Centrifugare a 11500 g per 10 minuti a + 4°C.
- Trasferire il sopranatante in eppendorf nuovi da 2,0 mL ed aggiungere 0,6 volumi di isopropanolo (ad esempio 300 µlitri x 0,6 = 180 µlitri). Agitare a culla per riprecipitare il DNA.
- Centrifugare a 11500 g per 10 minuti a + 4°C.
- Aggiungere 500 µlitri di etanolo al 70% (conservato a –20°C), alla soluzione preesistente (NaCl 1,2 M, cloroformio, isopropanolo), ed agitare a culla (o utilizzare il Vortex) fino a staccare il pellet originatosi dalle operazioni precedenti.
- Centrifugare a 11500 g per 10 minuti a 4°C.
- Gettare la soluzione acquosa scolando lentamente e facendo attenzione a non perdere il pellet originatosi in seguito alle centrifughe precedenti.
- effettuare un secondo lavaggio (se ritenuto necessario) con Etanolo al 70%
- Asciugare con lo speed vacuum per 5 minuti.
- Aggiungere 80-100 µlitri di tampone TE (pH 7,6) e lasciare in frigo a +4°C tutta la notte in modo che il DNA si risospenda nel tampone. In alternativa si possono incubare i tubi da 2.0 mL nel Thermomixer a 65°C per 10 minuti, in modo tale da sciogliere il pellet e permettere al DNA di entrare nella soluzione.