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PCR Descrizione Un generico protocollo per PCR (polymerase chain reaction). La PCR permette di amplificare una sequenza di DNA compresa fra due brevi sequenze per cui si costruiscono oligonucleotidi, detti primers. Per ogni campione : 2.5 µl Buffer PCR 10X (senza Mg++) 0.75 µl MgCl2 50mM 0.5 µl dNTPs 10mM 1 µl del mix dei due primer a 25 pmol/µl ciascuno. (questo può variare a seconda del gene target) 0.125 µl Taq (5U/µl) 18.125 µl acqua milliQ sterile Per un totale di 25µl a campione (se la PCR è preparativa si vorranno scalare questi valori in modo da ottenere un volume finale maggiore). Consiglio Può essere utile considerare 1 campione in più ogni 10/15 per compensare eventuali piccoli errori nel pipettamento. Consiglio Conviene mettere la Taq come ultimo reagente e tirarla fuori dal frigorifero solo prima dell'uso (come in generale tutti gli enzimi). ATTENZIONE: se la PCR è semiquantitativa i campioni di DNA vanno prima dosati (con lettura a 260 nm allo spettrofotometro) e diluiti tutti alla stessa concentrazione. Questo passaggio non è necessario per PCR solo qualitative. Un ciclo generico può essere: 2' a 95ºC 35-40 cicli di: 30" a 95º 45" alla temperatura di annealing dei primers (55-60º) 1'30" a 72º 10' a 72º 4º fino all'utilizzo PASSAGGIO IMPORTANTE ATTENZIONE: i vapori di EtBr sono molto tossici. Lasciare raffreddare brevemente la soluzione di agarosio prima di aggiungere EtBr, ed evitare comunque di respirarne i vapori. Lavorare sempre con i guanti. |
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