sbirciando nella sezione protocolli ho trovato questo protocollo di precipitazione dei prodotti di pcr http://www.molecularlab.it/protocolli/protocol.asp?id=23 Questo protocollo potrebbe favorire una resa maggiore, ossia una visualizzazione piu' nitida durante il controllo della digestione con corsa elettroforetica?
direi proprio di no...non mi sembra una grande idea...
tanto per carire meglio...
il frammento di PCR che ottieni è molto abbondante??? in quanto fai la reazione di PCR 50, 25 o 15 ul??
io ti dico...ne ho fatto un be pò di quel tipo di RFLP...
in genere usavo 10ul di PCR (non purificata, non è così necessario) facevo la digestione in un volume finale di 20ul buffer e BSA se necesario e un bel pò di enzima...tipo 5-10 unità..poi digestione 3h a 37°C
dovresti andare sul sicuro...
allora: quante volte taglia il tuo enzima nel frammento di PCR?
più volte taglia e meno abbondanti saranno i frammenti che otterrai...soprattutti quelli più piccoli...
la cosa milgiore da fare è partire con più materiale da digerire e aumentare l'apporto di enzima di conseguenza... (per es. fare la PCR in 50ul ed usarne 20 per la digestione portando il volume finale a 30-40ul al max)..
Infatti già faccio così, la pcr è effettuata in un volume finale di 50 ul, e la digestione è condotta con 25 ul di prodotto di pcr e 5 ul di mx di digestione. l'enzima taglia solo una volta
...E quanto abbondante è il frammento di PCR?? Ha una buona resa o no??
Quanto carichi su gel dei 50ul di PCR x controllarla prima della digestione?? Io ti consiglierei di caricarne 5ul e renderti conto da qui dell'efficiency della PCR...
io lavorei su questo step... come dicevi tu, l'enzima taglia solo 1 volta, quindi dovrebbe generare due frammenti od uno solo a seconda del polimorfismo...quindi l'abbondanza del tuo prodotto di PCR sarà dimezzata (o giù di lì) in un caso...
cercherei di massimizare la processività della PCR...